ݺߣ

ݺߣShare a Scribd company logo
Дисципліна
„БІОТЕХНОЛОГІЯ В РОСЛИННИЦТВІ”
Полімеразна ланцюгова реакція :
принципи та застосування
Викладач: доцент кафедри
землеробства, к.с.-г.н., доцент
Манушкіна Тетяна Миколаївна,
latushkina2004@mail.ru
МІНІСТЕРСТВО АГРАРНОЇ ПОЛІТИКИ ТА ПРОДОВОЛЬСТВА УКРАЇНИ
МИКОЛАЇВСЬКИЙ НАЦІОНАЛЬНИЙ АГРАРНИЙ УНІВЕРСИТЕТ
Кафедра землеробства
Література для підготовки до семінару
 1. Глик Б. Молекулярная биотехнология. Принципы и применение /
Б. Глик, Дж. Пастернак. Пер. с англ. – М. : Мир, 2002. – 589с.
 2. ДНК–технологии и биоинформатика в решении проблем
биотехнологий млекопитающих / В. И. Глазко, Е. В. Шульга,
Т. Н. Дымань, Г. В. Глазко. – Белая Церковь, 2001. – 488с.
 3. Использование ПЦР–анализа в генетико-селекционных
исследованиях / Под ред. Ю. М. Сиволапа. – К.: Аграрна наука, 1998.
– 156с.
 4. Мельничук М. Д. Біотехнологія рослин: підруч. / М. Д. Мельничук,
Т. В. Новак, В. А. Кунах – К. : Поліграфкосталтинг, 2003. – 520 с.
 5. Сиволап Ю. М. Важливіші принципи використання молекулярних
маркерів в насінництві / Ю. М. Сиволап // Сучасний стан та
перспективи розвитку насінництва в Україні: Наукові праці південного
філіалу «Кримський агротехнологічний університет» Націоналного
аграрного університету. Сільськогосподарські науки. – Вип. 107. –
Сімферополь, 2008. – С. 150-153.
Полімеразна ланцюгова реакція (ПЛР,
РСR – polymerase chain reaction) -
 це метод специфічної ампліфікації ДНК
in vitro, за допомогою якого протягом
декількох годин можна вибірково
розмножити необхідну ділянку ДНК у
мільйони разів.
 Метод розроблений в
1983 році
американським
біохіміком фірми
«Cetus» Кері Мюллісом і
співробітниками.
 В 1993 році К. Мюлліс
був удостоєний
Нобелівської премії в
області хімії.
Kary B. MULLIS
Завдання, що можна вирішувати за
допомогою ПЛР
 Ампліфікувати необхідну ділянку ДНК,
навіть якщо зразок містить сумарну
клітинну ДНК.
 Ампліфікувати ДНК, що міститься в
малих кількостях.
 Аналізувати зразки, що містять
деградовану ДНК (наприклад, рослинні
гербарії).
Суть ПЛР полягає у трьох процесах:
 Виділення ДНК.
 Ампліфікація ДНК.
 Детекція (розпізнавання)
ампліфікованих продуктів.
 Для ампліфікації вибраного фрагмента ДНК
використовують два праймера,
комплементарних сайтам на досліджуваній
ДНК.
 Праймери орієнтовані 3'- кінцями назустріч
один одному та убік тієї послідовності, яку
потрібно ампліфікувати.
 ДНК-полімераза здійснює синтез взаємно
комплементарних ланцюгів ДНК, починаючи із
праймерів. При синтезі ДНК праймери
фізично вбудовуються в ланцюг молекул
ДНК, що новосинтезуються.
 Кожна із синтезованих за допомогою одного із
праймерів молекул ДНК може бути матрицею
для синтезу комплементарної ДНК за
допомогою іншого праймера.
Типова ПЛР-ампліфікація
полягає в багаторазовому повторенні
трьох реакцій:
 Денатурація - теплова денатурація зразка ДНК
при температурі 95ºC впродовж 1хв. В
реакційній суміші разом з ДНК містяться в
надлишку два праймера, термостабільна ДНК
полімераза Tag і 4 дезоксирибонуклеотида.
 Ренатурація – температуру знижують до 55 ºC,
відбувається гібридизації праймерів з
комплементарними послідовностями ДНК,;
 Синтез - температуру підвищують до 75 ºC,
починається синтез комплементарного ланцюга
ДНК, що ініціюється 3'-гідроксильною групою
праймера.
Принцип ПЛР, перший раунд
 Кожен з
новосинтезованих
ланцюгів має значно
більшу довжину, ніж
відстань від 3'-ОН групи
“її” праймера до
кінцевого нуклеотида
послідовності,
комплементарної
другому праймеру.
 Такі ланцюги
називаються “довгими
матрицями”, саме на них
буде йти подальший
синтез.
Принцип ПЛР, другий раунд
 Дволанцюгову ДНК, що
складається з вихідного
ланцюга та “довгої
матриці”, знову піддають
денатурації, а потім
ренатурації з праймерами.
 Під час синтезу знову
утворюються “довгі
матриці”, а також деяка
кількість “коротких
матриць” – ланцюгів з
праймером на одному кінці
і послідовністю,
комплементарною другому
праймеру, на іншому.
Принцип ПЛР,
третій раунд
 В третьому та
подальших раундах
знову повторюються
реакції денатурації,
ренатурації та
синтезу, “коротких
матриць” стає все
більше.
Принцип ПЛР,
тридцятий раунд
 Кількість “коротких
матриць” в 1 млн.
разів перевищує
кількість вихідних
ланцюгів або “довгих
матриць”
Умови проведення ПЛР
 Всі реакції проводять у пробірках, розміщених у
термостаті.
 Зміна температурного режиму і його підтримка
здійснюються автоматично.
 Кожен цикл триває 3-5 хв.
Детекція ампліфікованої ДНК
 Одержану суміш фрагментів ДНК
разділяють методом
электрофореза.
Электрофореграма продуктів
ПЛР трансгеної Bt-картоплі
с використанням 35S-праймерів:
1- позитивний контроль;
2, 3 – трансгенні рослини;
4-6 – негативний контроль
(за: Мельничук та ін., 2003).
Секвенування фрагментів ДНК,
ампліфікованих у ході ПЛР, дозволяє:
 встановити молекулярно-генетичні
особливості структури генома;
 визначити генетичні взаємовідносини
селекційних форм;
 дослідити внутрішньовидову і
внутрішньопопуляційну мінливість.
Визначення генетичних
взаємовідносини селекційних форм
 Дендрограма,
що відображує
генетичні
взаимовідно-
сини між
деякими
сортами
винограду
Застосування ПЛР-аналізу в аграрних
технологіях
В селекції:
 проведення паспортизації сортів, ліній, гібридів і
вихідних рослин;
 упорядкування банку генетичних ресурсів.
У насінництві:
 для контролю чистоти сорту.
У біотехнології рослин:
 детекції наявності мутацій у сомаклональних
варіантів.
 У генній інженерії –
 визначити ефективність генетичної трансформації.
Контрольні питання до семінару
 1. Структура ДНК та її елементів.
 2. Дайте визначення: ПЛР, праймер.
 3. Суть методу ПЛР.
 4. Який матеріал можна використовувати для проведення ПЛР?
 5. Які компоненти необхідні для проведення ПЛР?
 6. Охарактеризуйте стадії ПЛР.
 7. Особливості ампліфікації ДНК у першому, другому, третьому й
наступному циклах ПЛР. Що таке довгі та короткі матриці?
 8. Умови проведення ПЛР.
 9. Детекція ампліфікованої ДНК. Секвенування.
 10. У чому суть дидезоксинуклеотидного методу?
 11. Опишіть послідовність проведення секвенування дидезокси-
нуклеотидним методом.
 12. Напрями використання ПЛР-аналізу ДНК рослин.
 13. Чим викликана необхідність проведення паспортизації сортів, ліній і
гібридів?
 14. Що таке дендрограмма?
 15. З якою метою проводиться картування генів?
 16. Підходи до розробки тест-систем на основі ПЛР для виявлення
трансгенів у генетично модифікованих організмах.
Успіхів у навчанні!

More Related Content

Лабораторна робота №5ПЛР

  • 1. Дисципліна „БІОТЕХНОЛОГІЯ В РОСЛИННИЦТВІ” Полімеразна ланцюгова реакція : принципи та застосування Викладач: доцент кафедри землеробства, к.с.-г.н., доцент Манушкіна Тетяна Миколаївна, latushkina2004@mail.ru МІНІСТЕРСТВО АГРАРНОЇ ПОЛІТИКИ ТА ПРОДОВОЛЬСТВА УКРАЇНИ МИКОЛАЇВСЬКИЙ НАЦІОНАЛЬНИЙ АГРАРНИЙ УНІВЕРСИТЕТ Кафедра землеробства
  • 2. Література для підготовки до семінару  1. Глик Б. Молекулярная биотехнология. Принципы и применение / Б. Глик, Дж. Пастернак. Пер. с англ. – М. : Мир, 2002. – 589с.  2. ДНК–технологии и биоинформатика в решении проблем биотехнологий млекопитающих / В. И. Глазко, Е. В. Шульга, Т. Н. Дымань, Г. В. Глазко. – Белая Церковь, 2001. – 488с.  3. Использование ПЦР–анализа в генетико-селекционных исследованиях / Под ред. Ю. М. Сиволапа. – К.: Аграрна наука, 1998. – 156с.  4. Мельничук М. Д. Біотехнологія рослин: підруч. / М. Д. Мельничук, Т. В. Новак, В. А. Кунах – К. : Поліграфкосталтинг, 2003. – 520 с.  5. Сиволап Ю. М. Важливіші принципи використання молекулярних маркерів в насінництві / Ю. М. Сиволап // Сучасний стан та перспективи розвитку насінництва в Україні: Наукові праці південного філіалу «Кримський агротехнологічний університет» Націоналного аграрного університету. Сільськогосподарські науки. – Вип. 107. – Сімферополь, 2008. – С. 150-153.
  • 3. Полімеразна ланцюгова реакція (ПЛР, РСR – polymerase chain reaction) -  це метод специфічної ампліфікації ДНК in vitro, за допомогою якого протягом декількох годин можна вибірково розмножити необхідну ділянку ДНК у мільйони разів.
  • 4.  Метод розроблений в 1983 році американським біохіміком фірми «Cetus» Кері Мюллісом і співробітниками.  В 1993 році К. Мюлліс був удостоєний Нобелівської премії в області хімії. Kary B. MULLIS
  • 5. Завдання, що можна вирішувати за допомогою ПЛР  Ампліфікувати необхідну ділянку ДНК, навіть якщо зразок містить сумарну клітинну ДНК.  Ампліфікувати ДНК, що міститься в малих кількостях.  Аналізувати зразки, що містять деградовану ДНК (наприклад, рослинні гербарії).
  • 6. Суть ПЛР полягає у трьох процесах:  Виділення ДНК.  Ампліфікація ДНК.  Детекція (розпізнавання) ампліфікованих продуктів.
  • 7.  Для ампліфікації вибраного фрагмента ДНК використовують два праймера, комплементарних сайтам на досліджуваній ДНК.  Праймери орієнтовані 3'- кінцями назустріч один одному та убік тієї послідовності, яку потрібно ампліфікувати.  ДНК-полімераза здійснює синтез взаємно комплементарних ланцюгів ДНК, починаючи із праймерів. При синтезі ДНК праймери фізично вбудовуються в ланцюг молекул ДНК, що новосинтезуються.  Кожна із синтезованих за допомогою одного із праймерів молекул ДНК може бути матрицею для синтезу комплементарної ДНК за допомогою іншого праймера.
  • 8. Типова ПЛР-ампліфікація полягає в багаторазовому повторенні трьох реакцій:  Денатурація - теплова денатурація зразка ДНК при температурі 95ºC впродовж 1хв. В реакційній суміші разом з ДНК містяться в надлишку два праймера, термостабільна ДНК полімераза Tag і 4 дезоксирибонуклеотида.  Ренатурація – температуру знижують до 55 ºC, відбувається гібридизації праймерів з комплементарними послідовностями ДНК,;  Синтез - температуру підвищують до 75 ºC, починається синтез комплементарного ланцюга ДНК, що ініціюється 3'-гідроксильною групою праймера.
  • 9. Принцип ПЛР, перший раунд  Кожен з новосинтезованих ланцюгів має значно більшу довжину, ніж відстань від 3'-ОН групи “її” праймера до кінцевого нуклеотида послідовності, комплементарної другому праймеру.  Такі ланцюги називаються “довгими матрицями”, саме на них буде йти подальший синтез.
  • 10. Принцип ПЛР, другий раунд  Дволанцюгову ДНК, що складається з вихідного ланцюга та “довгої матриці”, знову піддають денатурації, а потім ренатурації з праймерами.  Під час синтезу знову утворюються “довгі матриці”, а також деяка кількість “коротких матриць” – ланцюгів з праймером на одному кінці і послідовністю, комплементарною другому праймеру, на іншому.
  • 11. Принцип ПЛР, третій раунд  В третьому та подальших раундах знову повторюються реакції денатурації, ренатурації та синтезу, “коротких матриць” стає все більше.
  • 12. Принцип ПЛР, тридцятий раунд  Кількість “коротких матриць” в 1 млн. разів перевищує кількість вихідних ланцюгів або “довгих матриць”
  • 13. Умови проведення ПЛР  Всі реакції проводять у пробірках, розміщених у термостаті.  Зміна температурного режиму і його підтримка здійснюються автоматично.  Кожен цикл триває 3-5 хв.
  • 14. Детекція ампліфікованої ДНК  Одержану суміш фрагментів ДНК разділяють методом электрофореза. Электрофореграма продуктів ПЛР трансгеної Bt-картоплі с використанням 35S-праймерів: 1- позитивний контроль; 2, 3 – трансгенні рослини; 4-6 – негативний контроль (за: Мельничук та ін., 2003).
  • 15. Секвенування фрагментів ДНК, ампліфікованих у ході ПЛР, дозволяє:  встановити молекулярно-генетичні особливості структури генома;  визначити генетичні взаємовідносини селекційних форм;  дослідити внутрішньовидову і внутрішньопопуляційну мінливість.
  • 16. Визначення генетичних взаємовідносини селекційних форм  Дендрограма, що відображує генетичні взаимовідно- сини між деякими сортами винограду
  • 17. Застосування ПЛР-аналізу в аграрних технологіях В селекції:  проведення паспортизації сортів, ліній, гібридів і вихідних рослин;  упорядкування банку генетичних ресурсів. У насінництві:  для контролю чистоти сорту. У біотехнології рослин:  детекції наявності мутацій у сомаклональних варіантів.  У генній інженерії –  визначити ефективність генетичної трансформації.
  • 18. Контрольні питання до семінару  1. Структура ДНК та її елементів.  2. Дайте визначення: ПЛР, праймер.  3. Суть методу ПЛР.  4. Який матеріал можна використовувати для проведення ПЛР?  5. Які компоненти необхідні для проведення ПЛР?  6. Охарактеризуйте стадії ПЛР.  7. Особливості ампліфікації ДНК у першому, другому, третьому й наступному циклах ПЛР. Що таке довгі та короткі матриці?  8. Умови проведення ПЛР.  9. Детекція ампліфікованої ДНК. Секвенування.  10. У чому суть дидезоксинуклеотидного методу?  11. Опишіть послідовність проведення секвенування дидезокси- нуклеотидним методом.  12. Напрями використання ПЛР-аналізу ДНК рослин.  13. Чим викликана необхідність проведення паспортизації сортів, ліній і гібридів?  14. Що таке дендрограмма?  15. З якою метою проводиться картування генів?  16. Підходи до розробки тест-систем на основі ПЛР для виявлення трансгенів у генетично модифікованих організмах.